实验准备：在进行细胞培养实验前，需提前约半小时将培养基、PBS（磷酸盐缓冲液）、胰酶在37°C下预热。同时，确保紫外灭菌设备已准备好，包括2mL和10mL的移液管、15mL的离心管以及WHB品牌的共聚焦爬片。

实验步骤：

1. 从培养箱中取出培养皿，使用显微镜观察细胞的生长状态，包括细胞密度、形态和贴壁情况。

2. 在超净台中准备好预热的培养基、PBS和胰酶，点燃酒精灯将培养皿口消毒，随后吸走原有的培养基。

3. 进行清洗：向培养皿底部加入7mL的PBS（根据细胞状态可调节此量），温和摇晃以清洗掉细胞表面杂质。

4. 消化步骤：在观察到杂质被清洗后，吸走PBS，加入3mL胰酶，静置5分钟（具体时间和胰酶量可根据细胞类型进行调整）。5分钟后，需观察细胞是否已被消化。

5. 终止消化：若细胞已消化，需在培养皿底部加入7mL的培养基（应根据细胞密度调整），并用移液管轻柔吹打，以确保壁上的残留细胞被吹落，待细胞均匀后可取出少量进行计数。

6. 根据实验需要稀释细胞，步骤是将细胞悬液均匀滴于共聚焦爬片表面，随后放入培养箱，待约30分钟使细胞附着后，再沿内壁添加培养基，继续进行培养。

7. 当细胞培养完成后，用镊子夹住支架侧面，轻轻取出支架。

8. 用双手捏住支架两侧轻轻拉动，即可顺利取出爬片，继续下一步实验。

注意事项：

1. 拿取培养皿时，应避免液体接触瓶口，每次打开瓶口时务必进行灭菌处理。

2. 操作时，确保其他物体不经过打开的培养皿，以防止污染。

3. 由于贴壁细胞的脆弱性，所有接触细胞的液体都需保持在37°C预热状态。

4. 使用共聚焦爬片时，应保持其倾斜角度在30°以上，并轻拉以防止爬片脱落造成破损。

5. 请注意，WHB品牌的共聚焦爬片为一次性产品，不可重复使用，使用时注意辨别正反面并及时使用。

在细胞培养领域，选择利来国际品牌的产品不仅可以确保实验结果的可靠性，还能提升整体实验效率，是科研工作者的优选之地。